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Tris-EDTA buffer つまりTE溶液の作り方です。 TE溶液は基本的にDNAの溶解や保存にしようされますが、EDTAを入れる必要があるのはDNAを分解させない為です。 pHはおよそ7.2 ~ 8.0になるようにする。 (7.2からなのは一般的なTris-HCL緩衝液のpH適応範囲の為) pHは目的とする実験に依存するが、DNAの溶解、保存であれば上記の範囲であれば問題ない。 (しかしながら、多くの場合RNAにはpH7.5、DNAにはpH8.0が使われる) 普段作り置きしているTri-HCLやEDTA溶液のpHを決めておけば良いと考えられる。

スタンフォード大学図書館が提供する検索サービス。HighWire。もといHighWire Press。 とても使い勝手の良いサービスです。 よく使用されるPubMedとどこが異なるかというと、全文検索ができることです。 PubMedではアブストラクトまでしか見れませんから、そう考えると大変便利です。 是非、一度試してみてください。

TAE緩衝液の作製方法です。 Tris Acetate ETDA つまりTAE bufferです。 名前の通り必要とされているのはトリス、酢酸、エチレンジアミン四酢酸であり、 多くの研究室では大量に使用する為に50倍の濃度で作製をしておき、適時、1倍の濃度にするよう水で薄めて使用します。 用途としては主にアガロース電気泳動用の泳動バッファーであり、室温で保存します。 今回は50 x TAE溶液 1リットルを作製するための作製方法を以下に示します。

0.2 M リン酸ナトリウムバッファー(0.2M PB)、つまりリン酸緩衝液の作り方です。 リン酸緩衝液のpHの適応範囲は5.8~8.0で室温あるいは4℃にて保存します。 作製する際に作りたいpHになるよう下記の二種類の溶液のバランスを調整していく必要がありますので、作成する段階で決めておきましょう(基本的にはpH6.8が多いと思います)。 濃度はリン酸基で考えます。

マウスケラチノサイトの単離と培養のプロトコール。 マウスケラチノサイトの初代培養はヒトに比べて大変難しく、 継代を行うと細胞の増殖能の低下や形態変化が如実に現れます。 継代は50回以上可能であると書いてあるプロトコールもあれば、 継代は勧めないという書籍もあります。 かつては、非常にケラチノサイトの培養は難しく物理的な刺激でも、分化が始まってしまったりすると教わってきた時期もありましたが、近年では有用なmediumが増えてきており、そこまで神経質にならなくとも培養は可能です。 (それこそ継代を５０回以上行いたいなどとなれば、よほど神経質に行う必要がでてくるでしょうが。。) お勧めしているのはCELLnTEC社のPCT培地です。

iPS細胞にて一躍有名になられた山中伸弥博士。 2006年に米雑誌"Cell"にマウスでiPS細胞作製成功の論文をだし、その後2007年にはヒトでも成功させております。 わずか数年足らずでここまで大きな研究の分野が確立されたのは大変なことです。 今回、毎日新聞の記事にて山中博士のインタビューが乗っておりました。 研究の道筋を知ることができる貴重なものです。